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產(chǎn)品中心

Product Center

當(dāng)前位置:首頁(yè)產(chǎn)品中心蛋白研究蛋白純化(N30210-1L)Ni NTA Beads 6FF(鎳填料)

(N30210-1L)Ni NTA Beads 6FF(鎳填料)
產(chǎn)品簡(jiǎn)介

(N30210-1L)Ni NTA Beads 6FF(鎳填料),以高流速瓊脂糖為基質(zhì),以次氮基三乙酸(NTA)或亞氨基二乙酸(IDA)為配基,并鰲合金屬離子Ni2+而形成的一種親和層析介質(zhì)。該親和介質(zhì)不僅具有吸附容量大、選擇性好、分辨率高、超低限度的Ni產(chǎn)泄露、易于再生、成本低等優(yōu)點(diǎn),還有利于保持產(chǎn)品的生物活性和提高產(chǎn)品的收率,從而廣泛用于生物制藥和生物工程下游蛋白質(zhì)、核酸及多肽的分離純化。

產(chǎn)品型號(hào):
更新時(shí)間:2026-01-08
廠商性質(zhì):生產(chǎn)廠家
訪問(wèn)量:2711
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應(yīng)用領(lǐng)域食品/農(nóng)產(chǎn)品,化工,生物產(chǎn)業(yè),農(nóng)林牧漁,制藥/生物制藥

(N30210-1L)Ni NTA Beads 6FF(鎳填料)

貨號(hào):N30210

存儲(chǔ)條件:4-30℃

1、純化流程

1.1 Buffer 的準(zhǔn)備

Buffer 可使用下列推薦Buffer,也可根據(jù)自己的使用習(xí)慣配置不同的緩沖液體系,基本原理就是低咪唑上樣,高咪唑洗脫,或者高pH上樣,低pH洗脫。Buffer 在使用前最好用0.22μm 或者0.45μm濾膜過(guò)濾除菌。因?yàn)镹i NTABeads FF可以用于可溶蛋白和包涵體蛋白的純化,兩種方法所需Buffer 不同,具體配置方法見(jiàn)下表:


(N30210-1L)Ni NTA Beads 6FF(鎳填料)可溶性組an酸標(biāo)簽蛋白純化所需緩沖液及配方:

名稱

體積

配方

Lysis Buffer

1L

8 M Urea (480.50 g urea)

100 mM NaH2PO4 (15.60 g NaH2PO4·2H2O)

100 mM Tris·HCl (15.76 g Tris·HCl)

使用鹽酸溶液調(diào)節(jié) pH 至 8.0,

使用 0.22 或者 0.45 μm 濾膜過(guò)濾除菌。

Wash Buffer

1L

8 M Urea (480.50 g urea )

100 mM NaH2PO4 (15.60 g NaH2PO4·2H2O)

100 mM Tris·HCl (15.76 g Tris·HCl)

使用鹽酸溶液調(diào)節(jié) pH 至 6.3,

使用 0.22 或者 0.45 μm 濾膜過(guò)濾除菌。

Elution Buffer

1L

8 M Urea(480.50 g urea)

100 mM NaH2PO4(15.60 g NaH2PO4·2H2O)

100 mM Tris·Cl(15.76 g Tris·Cl)

使用鹽酸溶液調(diào)節(jié) pH 至 4.5,

使用 0.22 或者 0.45 μm 濾膜過(guò)濾除菌。


包涵體組an酸標(biāo)簽蛋白純化所需緩沖液及配方:

名稱

體積

配方

Lysis Buffer

1L

8 M Urea (480.50 g urea)

100 mM NaH2PO4 (15.60 g NaH2PO4·2H2O)

100 mM Tris·HCl (15.76 g Tris·HCl)

使用鹽酸溶液調(diào)節(jié) pH 至 8.0,

使用 0.22 或者 0.45 μm 濾膜過(guò)濾除菌。

Wash Buffer

1L

8 M Urea (480.50 g urea )

100 mM NaH2PO4 (15.60 g NaH2PO4·2H2O)

100 mM Tris·HCl (15.76 g Tris·HCl)

使用鹽酸溶液調(diào)節(jié) pH 至 6.3,

使用 0.22 或者 0.45 μm 濾膜過(guò)濾除菌。

Elution Buffer

1L

8 M Urea(480.50 g urea)

100 mM NaH2PO4(15.60 g NaH2PO4·2H2O)

100 mM Tris·Cl(15.76 g Tris·Cl)

使用鹽酸溶液調(diào)節(jié) pH 至 4.5,

使用 0.22 或者 0.45 μm 濾膜過(guò)濾除菌。

1.2樣品準(zhǔn)備

1.2.1細(xì)菌或酵母表達(dá)的蛋白

1、挑取單菌落到LB 培養(yǎng)基中,根據(jù)載體使用說(shuō)明加入相應(yīng)濃度的誘導(dǎo)劑誘導(dǎo)相應(yīng)的時(shí)間。

2、表達(dá)結(jié)束后,將培養(yǎng)液轉(zhuǎn)移到離心杯中,7,000rpm,離心15min 收集菌體,然后加入1/10 體積的 Lysis Buffer 和 PMSF,PMSF在破碎前加入,最終濃度為1mM。加入溶jun酶(工作濃度為0.2-0.4mg/ml,如果表達(dá)的宿主細(xì)胞內(nèi)含pLysS 或pLysE,可以不加溶jun酶),(同時(shí)也可加入其他蛋白酶抑制劑,但不能影響目的蛋白與樹脂的結(jié)合)。

3、將菌體沉淀懸浮起來(lái),(如果菌液濃度高,也可考慮加入10μg/ml RNase A 和5μg/ml DNase I),混勻,放置于冰上,然后冰上超聲破碎細(xì)胞,至菌液基本保持澄清。

4、將澄清的破碎液轉(zhuǎn)移至離心管中,10,000rpm 下,4 度離心 20-30 分鐘。取上清,置于冰上備用或-20度保存。

1.2.2酵母、昆蟲和哺乳細(xì)胞分泌表達(dá)可溶性蛋白

1、將細(xì)胞培養(yǎng)液轉(zhuǎn)移至離心杯,5000rpm 下,離心10min,收集菌體得上清,如上清中不含EDTA、組an酸和還原劑等物質(zhì),即可直接加入柱子使用;如含有EDTA、組an酸和還原劑等物質(zhì),需用1×PBS 4℃下透析才能加入柱子。

2、對(duì)于大量體積的上清,需加入硫酸氨沉淀濃縮后,蛋白還需用1XPBS 4℃透析后才能加入柱子。

1.2.3包涵體蛋白純化(變性條件)

1、將培養(yǎng)液轉(zhuǎn)移到離心杯中,7,000rpm,離心15min 收集菌體,去掉上清。

2、按照菌體:Lysis buffer=1:10(W/V)將菌體懸浮起來(lái),混勻,冰浴超聲破碎。

3、將破碎液轉(zhuǎn)移至離心管中,10,000rpm下,4 度離心20-30 分鐘。去掉上清,步驟2)和 3)可以重復(fù)一次。

4、按照菌體:Lysis buffer(含8M 尿素)=1:10(W/V)將包涵體懸浮起來(lái)。

5、變性條件下進(jìn)行His 標(biāo)簽蛋白純化,具體緩沖液配方見(jiàn)表4。

1.3Ni NTABeads 6FF 的裝填

Ni NTA Beads 6FF 被廣泛應(yīng)用于工業(yè)純化,因此,涉及到各種中壓色譜層析柱的填裝,下面介紹使用 Ni NTA Beads 6FF 填裝層析柱的方法。

層析柱的裝填(使用儲(chǔ)液器裝填)

1、用去離子水沖洗層析柱底篩板與接頭,確保柱底篩板上無(wú)氣泡,關(guān)閉柱底出口,并在柱底部留出1-2cm 的去離子水。

2、將樹脂懸浮起來(lái),小心的將漿液連續(xù)地倒入層析柱中。用玻璃棒沿著柱壁倒入漿液可減少氣泡的產(chǎn)生。

3、如果使用儲(chǔ)液器,應(yīng)立即在層析柱和儲(chǔ)液器中加滿水,將進(jìn)樣分配器放置于漿液表面,連接至泵上,避免在分配器或進(jìn)樣管中產(chǎn)生氣泡。

4、打開(kāi)層析柱底部出口,開(kāi)起泵,使其在設(shè)定的流速下進(jìn)行。最初應(yīng)讓緩沖液緩慢流過(guò)層析柱,然后緩慢增加至最終流速,這樣可避免液壓對(duì)所形成柱床的沖擊,也可以避免柱床形成的不均勻。如果達(dá)不到推薦的壓力或流速,可以用你所使用泵的最大流速,這樣也可以得到一個(gè)很好的裝填效果。(注意:在隨后的色譜程序中,不要超過(guò)最大裝柱流速的75%)當(dāng)柱床高度穩(wěn)定后,在最后的裝柱流速下至少再上3倍柱床體積的去離子水。標(biāo)上柱床高度。

5、關(guān)閉泵,關(guān)閉層析柱出口。

6、如果使用儲(chǔ)液器,去除儲(chǔ)液器,將分配器至于層析柱中。

7、將分配器推向柱子至標(biāo)記的柱床高度處。允許裝柱液進(jìn)入分配器,鎖緊分配器接頭。

8、將裝填好的層析柱連接至泵或色譜系統(tǒng)中,開(kāi)始平衡。如果需要可以重新調(diào)整分配器。

1.4樣品純化

Ni NTA Beads 6FF裝填好后,可以用各種常規(guī)的中壓色譜系統(tǒng),以ÄKTA 儀器使用為例介紹其使用方法。

1、將泵管道中注滿去離子水。去掉上塞子,將層析柱連接至色譜系統(tǒng)中,打開(kāi)下出口,將預(yù)裝柱接到色譜系統(tǒng)中,并旋緊。

2、用3-5 倍柱體積的去離子水沖洗出儲(chǔ)存緩沖液。

3、使用至少5 倍柱床體積的Lysis Buffer 平衡色譜柱。

4、利用泵或注射器上樣。注:樣品的粘度增加使得即使上樣體積很少,也會(huì)導(dǎo)致層析柱很大的反壓。上樣量不要超過(guò)柱子的結(jié)合能力。大量的樣品體積也可能造成很大的反壓,使得進(jìn)樣器更難使用。

5、用Wash Buffer 沖洗柱子,直到紫外吸收達(dá)到一個(gè)穩(wěn)定的基線(一般至少10-15個(gè)柱體積)。注:在樣品和結(jié)合緩沖液中加入咪唑可以提高樣品純度。

6、用Elution Buffer 采用一步法或線性梯度洗脫。一步洗脫中,通常 5 倍柱體積洗脫液就足夠了。可以用一個(gè)小的梯度,例如 20 倍柱體積或更多,來(lái)分離不同結(jié)合強(qiáng)度的蛋白質(zhì)。

1.5SDS-PAGE 檢測(cè)

將使用純化產(chǎn)品得到的樣品(包括流出組分、洗雜組分和洗脫組分)以及原始樣品使用SDS-PAGE 檢測(cè)純化效果。

2、在位清洗

當(dāng)填料使用過(guò)程中發(fā)現(xiàn)反壓過(guò)高或者填料上面出現(xiàn)明顯的污染時(shí),需要進(jìn)行在位清洗操作(Cleaning-in-Place,CIP)。在位清洗前,先把 Ni2+脫掉(參見(jiàn)3.填料再生),清洗結(jié)束后,將填料保存在 20%乙醇中,后者重新掛鎳再保存在20%乙醇中。建議按照下面操作去除填料上殘留的污染物,如沉淀蛋白、疏水蛋白和脂蛋白等。

去除強(qiáng)疏水結(jié)合的蛋白,脂蛋白和脂類

通過(guò)使用30%異丙醇清洗 5-10 個(gè)柱體積,接觸時(shí)間為15-20分鐘可以去除此類污染物。然后,再使用 10 倍柱體積的去離子水清洗。也可以選擇使用含有去污劑的酸性或堿性溶液, 清洗填料 2 倍柱體積。例如,含有 0.1–0.5% 非離子去污劑的 0.1 M 醋酸溶液,接觸時(shí)間為 1–2 小時(shí)。去污劑處理后,需要使用70%的乙醇清洗 5 個(gè)柱體積,以徹di去除去污劑。最后使用10倍柱體積的去離子水清洗。

去除離子作用結(jié)合的蛋白

使用1.5M NaCl 溶液接觸時(shí)間為10-15分鐘清洗。然后再使用去離子水清洗10個(gè)柱體積。

3、填料再生

組an酸標(biāo)簽蛋白親和純化填料所帶的鎳離子不需要經(jīng)常螯合去除和重新掛鎳離子。當(dāng)填料使用過(guò)程中發(fā)現(xiàn)反壓過(guò)高,填料上面出現(xiàn)明顯的污染,或者填料載量明顯變低時(shí),需要進(jìn)行對(duì)填料進(jìn)行鎳離子剝離和重新掛鎳離子,也就是填料再生。將填料裝填在合適的層析柱內(nèi),按照下面操作流程進(jìn)行鎳離子剝離和重新掛鎳離子。

3.1使用0.2 M 醋酸溶液(含6 M GuHCl)清洗 2 倍柱體積;

3.2使用去離子水清洗5 倍柱體積;

3.3使用2% SDS 清洗 3 倍柱體積;

3.4使用去離子水清洗5 倍柱體積;

3.5使用乙醇清洗5 倍柱體積;

3.6使用去離子水清洗5 倍柱體積;

3.7使用100 mM EDTA (pH 8.0)清洗 5 倍柱體積;

3.8使用去離子水清洗5 倍柱體積;

3.9使用100 mM NiSO4 清洗 5 倍柱體積;

3.10使用去離子水清洗10 倍柱體積;

填料再生后,可以立即使用,也可以保存在20%的乙醇中,置于 4°C 保存。

 

 

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